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恒溫水浴鍋在復合軟骨修復支架的搭建中的使用

返回列表 來源:未知 發(fā)布日期:2019-07-22 09:38【

關節(jié)軟骨中軟骨細胞少,不能充分填充缺損 區(qū),并且無血管結(jié)構,無神經(jīng)組織,無論是急性、慢 性還是退化性疾病引起的軟骨缺損,損傷后自我修 復能力差。傳統(tǒng)的軟骨修復方法,有微骨折手術、 骨軟骨移植術、骨膜移植術等,存在供源不足、疾 病傳播、免疫排斥等問題。組織工程的發(fā)展可解決 以上問題。本研究對α-1,3-半乳糖苷轉(zhuǎn)移酶基因敲 除豬肋軟骨脫細胞處理,獲得低免疫原性細胞外基 質(zhì),與聚合物甲基丙烯?;髂z(GelMA)溶液按不 同比例均勻混合,紫外交聯(lián)制備復合材料支架,用 于軟骨個性化修復。


1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 實驗材料和試劑


α-1,3-半乳糖苷轉(zhuǎn)移酶 基因敲除豬(南京華貞生物醫(yī)藥科技有限公司); GelMA(溫州優(yōu)墨生物科技有限公司);骨髓間充 質(zhì)干細胞(美國ATCC);Tris-HCl、十二烷基硫酸鈉 (SDS)、乙二胺四乙酸(EDTA)、4%組織細胞固定液、 中性樹脂、Masson三色染色液(北京索萊寶生物科 技有限公司);Aprotinin、Leupeptin(德國Roche 公司);PMSF(美國Sigma公司);胎牛血清、低糖 DMEM、0.25%胰酶(美國Gibco公司);DNeasy Blood & Tissue Kit(德國QIAGEN公司);胰蛋白酶(美國 Biosharp公司);蘇木素伊紅染色液、青霉素鏈霉 素、DAPI(上海碧云天生物技術有限公司);CCK-8 試劑盒(日本同仁公司);Live/Dead試劑盒(美國 Thermo公司);羅丹明標記的鬼筆環(huán)肽(上海翊圣 生物科技公司)。


1.1.2 實驗儀器

冰凍切片機、NanoDrop(美國 Thermo公司);掃描電鏡(scanning electron microscope,SEM,日本Hitachi公司);冷凍研磨儀(德 國Retsch公司);正置熒光顯微鏡(日本Nikon公 司);DHR流變儀(美國TA公司);低溫離心機(德國 Eppendorf公司);電熱恒溫水浴鍋(上海精宏實驗設備有限公司);全波長微孔讀板機(美國BioTek 精宏公司);真空冷凍干燥機(北京博醫(yī)康實驗儀 器有限公司);精密分析型電子天平(德國賽多利斯科學儀器有限公司)。


1.2 方法

1.2.1 脫細胞軟骨的制備


取新鮮基因敲除豬軟骨 去除軟組織及骨膜,切成約1.5 cm×0.5 cm×0.2 cm 的塊狀軟骨,聯(lián)合應用胰蛋白酶、去污劑、核酸酶、蛋白酶抑制劑對塊狀軟骨進行脫細胞處理。具體脫 細胞流程如下(每進行下一步前均用超純水清洗軟 骨):

①將塊狀軟骨放入Tris-HCl溶液(10 mmol/L, pH 8.0)中孵化 24 h,控制溫度于 45 ℃;

②在 0.25%的胰蛋白酶溶液中消化24 h,保持溫度37 ℃, 作用24 h;

③放入含 0.1% SDS的Tris-HCl溶液 (10 mmol/L,pH 8.0)中24 h,恒溫45 ℃;

④用 含0.1% EDTA的 PBS緩沖液,配制蛋白酶抑制劑 (PMSF 1 mmol/L、leupeptin 1 μg/mL、aprotinin 10 kIU/mL),放入該溶液中清洗2次,每次30 min, 恒溫37 ℃;

⑤再次放入含0.1% SDS的Tris-HCl溶 液(10 mmol/L,pH 8.0)中,恒溫45 ℃,孵化24 h;

⑥在50 mmol/L,pH 7.5的Tris-HCl溶液中,配制 氯化鎂10 mmol/L、牛血清白蛋白50 μg/mL、DNA酶 50 U/mL和RNA酶1 U/mL,置于該溶液中作用3 h, 恒溫37 ℃;

⑦在含有0.1% EDTA、蛋白酶抑制劑的 PBS緩沖液中,清洗2次,每次30 min,恒溫37 ℃;

⑧PBS緩沖液反復多次清洗,-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/span>


1.2.2 脫細胞軟骨粉的制備

將脫細胞軟骨骨塊 放在冷凍干燥機中凍干3 h,隨后用冷凍研磨儀研 磨成骨粉。設置研磨頻率為20 r/s,時間為15 min, 循環(huán)2次。過篩選取粒徑<100 μm的骨粉,-80 ℃ 保存?zhèn)溆谩?/span>


1.2.3 脫細胞效果檢測

①DAPI染色檢測脫細胞 效果:將天然軟骨、脫細胞塊狀軟骨用冰凍切片機 切成厚度為5 μm的切片,做好標記,在切片上滴加 DAPI工作液,避光,室溫孵育15 min,PBS漂洗3次, 每次5 min,封片后熒光顯微鏡下觀察。

②軟骨DNA 含量檢測:稱取天然骨粉、脫細胞骨粉各20 mg,裝 入1.5 mL EP管中做好標記,取出DNeasy Blood & Tissue Kit,分別在EP管中加入 180 μL Buffer ATL,20 μL蛋白激酶K,混勻,在56 ℃下孵育2 h 直到組織裂解,在孵育過程中要間斷振蕩;加入 200 μL Buffer AL,混勻;加入200 μL無水乙醇, 混勻;將上述混合物移至 2 mL EP管中的DNeasy Mini濾柱中,6 000×g離心1 min后,棄去濾液、EP管; 將濾柱放入新的2 mL收集管中,加入500 μL Buffer AW1,6 000×g離心1 min后,再棄去濾液、收 集管;將濾柱放入新的2 mL收集管中,加入500 μL Buffer AW2,2 000×g離心3 min后,棄去濾液、收 集管;將濾柱移至新的1.5 mL EP管中,200 μL Buffer AE加到濾柱膜中央洗提DNA,室溫下孵育 1 min,6 000×g離心1 min,重復1次;用Nanodrop檢測DNA純度、濃度,每個樣品重復3遍,取平均值。

③PCR檢測β-actin基因的表達:β-actin引物序列: 上游5’-CATGTACGTTGCTATCCAGGC-3’,下游5’-CTCCTTA ATGTCACGCACGAT-3’,反應條件為94 ℃ 3 min,30 個循環(huán)94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃延伸 30 s, 最后72 ℃ 5 min,4 ℃保存。反應結(jié)束后用2%瓊 脂糖凝膠電泳,用凝膠成像系統(tǒng)觀察,拍照,分析。


1.2.4 細胞外基質(zhì)結(jié)構及膠原纖維成分檢測

HE 染色檢測細胞外基質(zhì)結(jié)構,步驟如下:將天然軟骨、 脫細胞塊狀軟骨用冰凍切片機切成厚度為5 μm的切 片,蘇木素染色液染色10 min,自來水沖凈多余的 染液,蒸餾水洗滌5 s后,伊紅染色液染色3 min, 洗凈多余染液,甘油封片,于顯微鏡下觀察拍照。 Masson三色染色檢測細胞外基質(zhì)中膠原纖維成分, 步驟如下:取天然軟骨與脫細胞軟骨切片,用配制 好的Weigert鐵蘇木素染色液染色7 min;酸性乙醇 分化液分化10 s,水洗;藍化液返藍5 min;蒸餾 水洗1 min;麗春紅品紅染色液染色2 min;按蒸餾 水:弱酸溶液按2:1比例配置,用弱酸工作液洗滌 1 min;磷鉬酸溶液洗1 min;弱酸工作液洗1 min; 再直接放入苯胺藍染色液中2 min;弱酸工作液洗1 min;最后封片,光學顯微鏡下觀察。


1.2.5 SEM觀察

收集脫細胞軟骨骨粉,冷凍干燥 過夜,用導電膠帶將樣品粘在銅片座上,對樣品噴 金處理后,用SEM觀察骨粉形態(tài)。


1.2.6 制備脫細胞軟骨/GelMA復合材料支架

以脫 細胞軟骨粉、10% GelMA(取代度75%)前體為原料, 按不同比例(0:100、20:80、35:65、45:55、50:50) 均勻混合,加入 0.5%(w/v)光引發(fā)劑[2-羥基-4’- (2-羥乙氧基)-2-甲基苯丙酮],在聚四氟乙烯模具 上用光強為18 mW/cm2 ,波長為365 nm的紫外光交 聯(lián)制備脫細胞軟骨/GelMA復合支架(厚1 mm,直徑 8 mm)。


1.2.7 對支架進行表征

①溶脹性能檢測:將復 合支架放入37 ℃ PBS中,分別在5 min、10 min、 20 min、30 min、1 h、2 h、4 h稱重,稱重前用濾 紙將表面溶液吸干,記支架質(zhì)量為Wt。達溶脹平衡 的支架放入冷凍干燥機中凍干24 h,稱重記質(zhì)量為 W0。按下述公式計算支架質(zhì)量溶脹P(w),重復3次, P(w)=Wt/W0。

②儲能模量檢測:用DHR流變儀8 mm 的平行板夾具,設置1%的形變,37 ℃下,在0.1~ 10 Hz范圍內(nèi)進行振蕩頻率掃描測試,測不同骨粉 含量支架的儲能模量,每組3個重復樣品。


1.2.8 支架上細胞增殖實驗

首先進行骨粉滅菌: 將天然軟骨骨粉、脫細胞軟骨骨粉,浸入 75%乙醇 溶液中滅菌24 h,之后離心去上清液,將骨粉放入 冷凍干燥機中干燥過夜。將GelMA溶于PBS緩沖液中, 配制成10% GelMA溶液,在生物安全柜中用0.22 μm 的濾膜對其進行過濾,將過濾的光引發(fā)劑加入其 中,濃度為 0.5%,按上述不同比例均勻混合軟骨 骨粉和 GelMA溶液,在 96 孔板中制備復合材料支 架。在每個含有支架的孔板上,接種 5 000個人骨 髓間充質(zhì)干細胞,在 37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中用低 糖DMEM+10%胎牛血清+1%青霉素鏈霉素培養(yǎng)基培養(yǎng) 5 d,培養(yǎng)基每3 d更換1次。分別在第1、第3、第5 天用CCK-8細胞增殖毒性檢測試劑盒檢測細胞活性。


1.2.9 支架上細胞Live/Dead染色

使用Live/ Dead試劑盒評估支架上細胞活力。取細胞接種后第 1、第7、第14天樣品評估活力。設置激發(fā)/發(fā)射濾 片488/530 nm觀察活細胞(綠色),530/580 nm觀察 死細胞(紅色)。Live/Dead試劑盒使用步驟:先根 據(jù)說明書配置Live/Dead檢測工作液;吸去樣品中 培養(yǎng)基后加入200 μL Live/Dead檢測工作液,室溫 避光孵育25 min;吸去染液后用無菌PBS清洗3遍, 加入1 mL PBS溶液,熒光顯微鏡下觀察拍照。


1.2.10 支架上細胞骨架、細胞核染色

取干細胞 接種后第 7、第 14 d的樣品,用 4%多聚甲醛固定, PBS清洗3遍。室溫下用0.1%的Triton處理20 min后, 避光下用羅丹明標記的鬼筆環(huán)肽(濃度為1:200)標 記細胞骨架15 min,用PBS洗3次,DAPI工作液細胞 核染色15 min。再用PBS清洗3次,加入1 mL PBS后, 用熒光顯微鏡觀察(紅色熒光為細胞骨架染色,藍 色熒光為細胞核染色)。


1.3 統(tǒng)計學處理方法

采用SPSS24.0軟件進行統(tǒng) 計學分析。計量資料以 ±s表示,2組比較采用t檢 驗,多組比較采用單因素方差分析。P<0.05為差 異有統(tǒng)計學意義。 2 結(jié)果 2.1 脫細胞效果 DAPI染色結(jié)果顯示,天然軟骨 組織可見細胞核成分,而脫細胞軟骨組織幾乎無細 胞核成分存在。進一步DNA含量檢測顯示, 天然軟骨DNA含量為161.2 ng/mg,而脫細胞軟骨 DNA含量為15.27 ng/mg,與天然軟骨組織比較差異 有統(tǒng)計學意義。


3 討論

骨關節(jié)炎以關節(jié)軟骨丟失為特征,與骨肥大和 囊膜增厚有關,表現(xiàn)為關節(jié)疼痛、壓痛、活動受限、 龜裂、滲出、局部炎癥,可發(fā)生在任何關節(jié),最常見 的是膝、髖關節(jié)和手、腳、脊柱等處的關節(jié)。60歲 以上男性發(fā)病率為9.6%,女性發(fā)病率為18%。在美 國,30%成年人都會受關節(jié)疼痛、腫脹或運動受限的 影響。傳統(tǒng)的軟骨修復方法,有微骨折手術、軟 骨下鉆孔術、骨軟骨移植術、骨膜移植術等。微骨 折術、軟骨下鉆孔術恢復周期長,形成的是無序的 纖維軟骨,在組織學上纖維軟骨與正常透明軟骨不 同,導致療效不佳。自體骨軟骨移植手術簡單, 是一次性手術,但是供源不足,難以維持軟骨細胞表型,不能用于修復超過2 cm2的缺損。同種異 體骨移植可修復較大面積缺損,但會引起免疫排斥 反應,存在疾病傳播風險。組織工程的發(fā)展解決 了軟骨修復的眾多難題,然而異種生物材料植入靈 長類體內(nèi)后會發(fā)生特有的超急性排斥反應,該排異 反應與異種內(nèi)皮細胞表面α-1,3-半乳糖基糖蛋白分 子有關。由于靈長類動物沒有該糖分子,因此體內(nèi) 有大量的α-1,3-半乳糖基糖蛋白分子的抗體存在。 這些抗體迅速激活補體反應,破壞異種組織內(nèi)皮細 胞而引起超急性排異反應。

本研究采用的α-1,3-半 乳糖苷轉(zhuǎn)移酶基因敲除豬,具有低免疫原性,對其 肋軟骨脫細胞處理,保留了細胞外基質(zhì)的同時進一 步降低了免疫原性。盡管脫細胞過程能除去90%細 胞,去除大部分異種抗原,但不能完全清除干凈, 異種組織仍會殘留一小部分抗原,該基因敲除豬能從根源上降低免疫原性,不管在細胞內(nèi)還是細胞外 基質(zhì)中都不存在α-1,3-半乳糖基糖蛋白分子,因而 大大降低了異種生物材料移植的風險。美國麻省 總醫(yī)院已成功將基因敲除豬的腎臟、心臟移植到狒 狒,克服了超急性免疫排斥反應。